Chlamydieninfektion der Katze

Einleitung

Der www.katzenschnupfen.de kann sich, trotz des harmlosen Namens, zu einer lebensgefährlichen Erkrankung entwickeln. Während sich die Anfangssymptome auf eine leichte Bindehautentzündung und/oder vereinzelte Nieser beschränken kann, sind in einem fortgeschrittenen Krankheitsverlauf schwere Erkrankungen mit eitrig verklebten Augen, einer schmerzhaften Entzündung der Zunge, die mit Nahrungsverweigerung und Gewichtsverlust einhergeht. Die Infektion erfolgt durch direkten Kontakt zu infizierten Katzen oder durch eine Tröpfcheninfektion.

Mehr Informationen zum Katzenschnupfen finden Sie auf der Internetseite www.katzenschnupfen.de.

Hauptverantwortliche Erreger des Katzenschnupfens sind feline Herpes- und Caliciviren sowie Chlamydien, Mykoplasmen und Bordetellen (Siehe auch www.bordetella.de).

Dieses Fokusthema befasst sich vor allem mit der Rolle der Chlamydien (Chlamydophila felis). Die Chlamydiose der Katze betrifft vor allem die Augen und äußert sich hauptsächlich durch ein- oder beidseitige Bindehautentzündungen.

Insbesondere bei Katzenwelpen und in Einrichtungen, in denen mehrere Katzen leben (Pensionen, Zuchten, Tierheime, Ausstellungen und Mehrkatzenhaushalten), kann die Chlamydiose zum Problem werden.

Deshalb wird für solche gefährdeten Tiere zusätzlich zu den Core-Impfungen (Pflichtimpfung) gegen feline Herpes- und Caliciviren, die Non-Core-Impfung (Wahlimpfung) gegen C. felis dringend empfohlen. Da infizierte Tiere die Erreger u.U. aber auch auf Menschen übertragen können (Zoonose ), empfiehlt sich möglicherweise auch eine Impfung für Einzeltiere.

Katzenschnupfen

„Katzenschnupfen“ ist ein Sammelbegriff für ansteckende Erkrankungen der Atemwege bei Katzen. Andere Bezeichnungen für Katzenschnupfen sind infektiöse Katzenrhinitis, Rhinothracheitis infectiosa felis, cat flu, feline upper respiratory disease (FURD) und Katzenpneumonie (Hartmann, Hein 2002).

Erreger

Der Symptomkomplex „Katzenschnupfen“ kann durch unterschiedliche Erreger ausgelöst werden. Zu diesen Erregern gehören neben Viren (Herpes - und Caliciviren) auch Bakterien (Bartonellen, Bordetellen, Chlamydien und Mykoplasmen).

Dem „Katzenschnupfen“ liegen in der Regel Infektionen mit mehreren Erregern zu Grunde, die sich gegenseitig begünstigen. Atemwegserkrankungen bei der Katze sollten daher stets als multifaktorielle Geschehen betrachtet werden (Huebner 2008).

Klinisches Bild

Katzen mit Katzenschnupfen zeigen sehr vielschichtige Symptome, die nicht eindeutig einem Erreger zuzuordnen sind. Der Krankheitsverlauf kann ausschließlich mit serösem Nasenausfluss einher gehen. Je nach beteiligten Erregern sind aber auch Bindehautentzündungen, Geschwüre auf der Zunge, vermehrter Speichelfluss, Futterverweigerung, Nekrosen an den Nasenflügeln, Atemnot, Husten und Fieber mit einem hochgradig gestörten Allgemeinbefinden möglich. Systemische Ausbreitungen der beteiligten Erreger im ganzen Organismus können tödlich enden (Huebner 2008).

Diagnose

Die Diagnose „Katzenschnupfen“ lässt sich anhand der klassischen Symptomatik stellen. Für die Prognose und zum Einleiten einer kausalen Therapie ist die Identifikation der beteiligten Erreger jedoch wichtig (Huebner 2008; Hartmann, Hein 2002). Dies gilt insbesondere für die Sanierung von Problembeständen.

Differentialdiagnose

Als Differentialdiagnosen zum Katzenschnupfen kommen folgende Erkrankungen in Frage (Huebner 2008):

• Felines Asthma
• Fremdkörper (regurgitierte Grashalme)
• Allergie
• Infektionen mit Capillaria aerophila oder Cryptococcus neoformans
• Tumorerkrankungen

Bedeutung der Chlamydieninfektion der Katze

Chlamydophila (C.) felis zählt zu den Erregern, die an dem Symptomkomplex „Katzenschnupfen“ beteiligt sind. Nachdem lange Zeit Unklarheit über seine taxonomische Zuordnung herrschte, wird C. felis inzwischen der Familie der Chlamydiaceae zugeordnet. Chlamydien sind streng intrazellulär lebende, gramnegative Bakterien, die zum Überleben und zur Vermehrung auf eine Wirtszelle angewiesen sind (Hartmann, Hein 2008).

C. felis wurde erstmals 1942 bei einer Katze mit einer Lungenentzündung (Pneumonie) beschrieben. Heute ist C. felis vor allem im Zusammenhang mit Bindehautentzündungen bei Katzen von Bedeutung (Huebner 2008). 18-30% aller chronischen Bindehautentzündungen bei der Katze gehen auf Infektionen mit C. felis zurück (Hartmann, Hein 2008).

Derzeit geht man von verschiedenen Subtypen von C. felis aus, die eine unterschiedliche Virulenz aufweisen (Huebner 2008). In anderen Quellen ist von Chlamydien-ähnlichen Organismen (z.B. Parachlamydiaceae) die Rede, die bei Katzen nachgewiesen worden sind (Sykes 2005).

Entwicklungszyklus

Chlamydien entwickeln sich in zwei Phasen, die durch ihre jeweilige morphologische Erscheinungsform charakterisiert sind: Elementarkörperchen und Retikularkörperchen (Longbottom, Livingstone 2004).

Die extrazellulär gelegenen, relativ kleinen Elementarkörperchen (EK) sind infektiös, verfügen jedoch über keinen aktiven Stoffwechsel. Sie gelangen über Phagozytose in die Zielzelle (Epithelzellen), wo sie zu den so genannten Retikularkörperchen heranreifen.

Die vergleichsweise größeren Retikularkörperchen (RK) sind dagegen metabolisch aktiv. Sie vermehren sich im Inneren der Wirtszelle, im so genannten Zytoplasma, durch Teilung. Am Ende des Entwicklungszyklus reorganisieren sie sich wieder zu infektiösen Elementarkörperchen und werden durch Exozytose oder Lyse aus der Zelle ausgeschleust (Klein1997; Longbottom, Livingstone 2004).

Infektionswege

Chlamydien werden durch direkten Kontakt mit Konjunktivalsekreten (Huebner 2008) und indirekt über Sekrete oder als Tröpfcheninfektion (Hartmann, Hein 2002) übertragen. Eine Infektion über den Deckakt konnte bislang nicht zweifelsfrei nachgewiesen werden, obwohl nach experimenteller Infektion eine Erregerisolierung auch aus Vaginal- und Rektalabstrichen gelang (Hartmann, Hein 2002).

Nachdem sich C. felis vor allem in den Epithelzellen der Lidbindehäute vermehrt hat, dauert die Ausscheidung der Elementarkörperchen bis zu 60 Tage (Hartmann 2003). Bei Koinfektionen mit anderen Erregern (z.B. felines Herpes- oder Calicivirus) ist auch eine längere Ausscheidung möglich (Anonymus 2008). Die Elementarkörperchen bleiben in der Umwelt jedoch nur wenige Tage infektiös.
In Tierbeständen kann die Infektion hingegen über Monate oder sogar Jahre bestehen bleiben (Hartmann, Hein 2008).

Persistierende Infektionen sind möglich (Huebner 2008). Für auftretende Rezidive scheint ein chronisches Trägerstadium verantwortlich zu sein, bei dem eine Reaktivierung durch Stress möglich ist (Hartmann, Hein 2002; Hartmann, Hein 2008).

Bei experimentell infizierten Katzen konnten auch Lahmheiten durch immer wiederkehrende Gelenksentzündungen beobachtet werden. Eine Beeinträchtigung der Fruchtbarkeit, wie beim Schaf beschrieben, ist bei Katzen nicht bewiesen. Bei Tieren, die durch FIV- oder FeLV-Infektionen immunsupprimiert sind, kann es unter natürlichen Bedingungen zu genitalen Infektionen mit Rötung, Schwellung und Ausfluss kommen (Hartmann, Hein 2002).

Klinik

Nach einer Inkubationszeit von 3-5 Tagen (Hartmann 2003), sind erste Anzeichen einer Bindehautentzündung zu erkennen. Anfänglich ist meist nur ein Auge betroffen, später beide. Symptome sind wässriger Augenausfluss, der später auch eitrig werden kann und Krämpfe des oder der Augenlider. Die Bindehäute sind auf Grund der Entzündung vermehrt gefüllt und entsprechend gerötet sowie geschwollen.

Die Symptome können über einige Wochen bis Monate bestehen bleiben. Nasenausfluss, Niesen, Husten sowie Fieber werden durch C. felis selbst selten verursacht, treten aber im Rahmen des Symptomkomplexes Katzenschnupfen auf (Hartmann, Hein 2008).

Erregernachweis

Vor allem in Hinblick auf die Therapie ist es wichtig zu wissen, ob eine einzelne oder eine Mischinfektion vorliegt. Die Kenntnis der beteiligten Erreger ist außerdem für die Betreuung von Zuchten, Katzenpensionen und Tierheimen von großer Bedeutung (Huebner 2008).

Der Erregernachweis wird in einem Untersuchungslabor geführt. Als Untersuchungsmaterial eignet sich eine Blutprobe oder ein Abstrich, den der Tierarzt aus dem Auge entnehmen muss, einem so genannten Konjunktivalabstrich.

Die streng intrazellulär lebenden Chlamydien sind mit den üblichen bakteriologischen Methoden nicht nachweisbar. Deshalb sollte vor der Einleitung von mikrobiologischen Untersuchungen zum Nachweis von Chlamydien das jeweilige Labor kontaktiert werden, um sich über vorhandene Nachweisverfahren sowie optimale Probenentnahme und –versand zu informieren.

Lange Zeit galt die Anzucht der Chlamydien aus dem Untersuchungsmaterial in geeigneten Zelllinien oder dem bebrüteten Hühnerei als Standardnachweismethode. Die Anzucht ist die einzige Möglichkeit, um die Lebensfähigkeit der Erreger zu demonstrieren und anschließend einer detaillierten Charakterisierung zuzuführen (Sachse, Großmann 2002).

Allerdings ist es für die Anzucht erforderlich, dass die Chlamydien zum Zeitpunkt der Untersuchung noch in ausreichender Menge vermehrungsfähig sind. Da die Anzucht außerdem lange Zeit dauert und arbeitsaufwändig ist, ist sie durch andere Nachweismethoden abgelöst worden.

Heute weist man die Chlamydien in der Routinediagnostik indirekt serologisch (Antikörpernachweis) oder besser durch den direkten Antigennachweis nach.

Beim Antikörpernachweis ergeben sich grundsätzlich Probleme bei niedrigen oder spät erscheinenden Antikörpertitern, beispielsweise bei klinisch unauffälligen Ausscheidern. Einmalige Untersuchungen genügen deshalb meistens nicht, um gemessene Titer zu beurteilen (Sachse, Großmann 2002).
Nur ein eindeutiger Titeranstieg ist beweisend für eine akute Infektion. Impftiter und Titer, die nach einer überstandenen Infektion bestehen bleiben, können die Interpretation eines serologischen Ergebnisses erschweren (Klein 1997).

Für die Untersuchung muss Serum (i.d.R. 0,5ml) oder ein Schleimhauttupfer in einem speziellen Transportmedium (Chlamydienmedium) in das Labor eingeschickt werden.

Der Nachweis einer bestehenden Erreger-Ausscheidung ist nur über den Antigennachweis möglich. Die aussagekräftigsten Ergebnisse erzielt daher der direkte Antigennachweis mittels Immunfluoreszenz (IF), Enzymimmunoessay (EIA) oder die Polymerase Chain Reaction (PCR) (Klein 1997).
Mit diesen drei Methoden können auch Chlamydien nachgewiesen werden, die zum Zeitpunkt der Laboruntersuchung nicht mehr vermehrungsfähig sind.

Da Chlamydien intrazelluläre Erreger sind, ist bei der Probenentnahme (Konjunktivalabstrich) darauf zu achten, möglichst zellreiche Tupferproben zu gewinnen („beherzt tupfern“). Störende Beläge (Eiter, Schleim, Krusten o.ä.) sollten vorher entfernt werden (Biocontrol). Die aussagekräftigsten Ergebnisse erhält man, wenn die Proben beim ersten Auftreten der Symptome entnommen werden (VetMedLab).
Für den Enzymimmunoassay (EIA) ist ein besonderes Transportmedium (Chlamydien-Medium) erforderlich, für die PCR ein trockener Tupfer ohne Transportmedium (Laboklin).

Die PCR ist schnell und sensitiver als die herkömmlichen Methoden und weist eine hohe Spezifität auf. Sie ermöglicht die direkte Untersuchung aller klinischer Materialien ohne Anzüchtung und stellt geringe Anforderungen an das Untersuchungsmaterial hinsichtlich Lagerungs- und Transportbedingungen (Sachse, Großmann 2002). Auch kleinste Mengen eines bereits abgetöteten Erregers werden nachgewiesen (Hartmann, Hein 2002).

Nicht so sensitiv wie die Zellkultur und auch weniger spezifisch sind kommerziell erhältliche Testverfahren. Mit deren Hilfe wird das Chlamydien-spezifische Lipopolysaccharid-Antigen im Konjunktivalabstrich durch Immunfluoreszenz (seltener ELISA) nachgewiesen (Hartmann, Hein 2002). Ein Nachteil dieser Tests besteht im relativ hohen Anteil falsch-positiver Befunde, die aus Kreuzreaktionen mit anderen Bakterien resultieren oder durch Augensalben- oder Fluorescein-Reste verursacht werden können. Beim IFA werden nur die intrazellulären Retikularkörperchen erfasst, deshalb können durch eine zu geringe Zellzahl auf dem Objektträger falsch-negative Ergebnisse entstehen (Anonymus 2008 und Sachse, Großmann 2002).

Der Direktnachweis intrazytoplasmatischer Einschlusskörperchen (z.B. Giemsa-gefärbter Konjunktivalabstrich) hat den Nachteil, dass diese oft nur in der Frühphase der Infektion bzw. nur bei Proben mit hohem Antigengehalt zu finden sind. Außerdem besteht eine Verwechslungsgefahr mit Melaningranula, die zu falsch positiven Befunden führen kann (Hartmann, Hein 2002 und Sachse, Großmann 2002).

Diagnostik der anderen Katzenschnupfen-Erreger Auch FHV und FCV werden mit Hilfe der PCR nachgewiesen, da eine Antikörpertiterbestimmung auf Grund der Impfung gegen Katzenschnupfen nur unter Vorbehalt interpretiert werden kann. Seit kurzem steht diese Methode auch für die Diagnose von Mycoplasma felis und Bartonella henselae zur Verfügung (Huebner 2008).

Für den Nachweis von B. bronchiseptica empfiehlt sich ein Rachen- oder Nasensekrettupfer in einem Aktivkohle-haltigem Transportmedium und eine anschließende Anzucht auf einem selektiven Nährboden (Huebner 2008).

Therapie

Wenden Sie sich bei auftretenden Augenentzündungen oder Schnupfen-Symptomen umgehend an Ihren Tierarzt, denn nur durch eine frühzeitige und regelmäßig durchgeführte antibiotische Behandlung können schwerwiegende Folgen vermieden werden.

Gerade bei Katzenwelpen sollte eine Bindehautentzündung nicht auf die leichte Schulter genommen werden. Unsachgemäße Behandlungsversuche helfen nicht, ermöglichen es dem Erreger aber, sich ungehindert auszubreiten. Je länger die Entzündung ohne Behandlung bleibt, desto gravierender sind die Folgen.

Die Therapie eines akuten Katzenschnupfens erfordert eine intensive Behandlung des Patienten sowie eine gründliche Hygiene. Bei akutem Katzenschnupfen sollte - auch bei primär nur viraler Ursache - immer antibiotisch therapiert werden, um Sekundärinfektionen zu vermeiden.

Zusätzlich können zur Stärkung des Immunsystems so genannte Paramunitätsinducer eingesetzt werden. Unter Umständen sind auch die Verabreichung von Infusionen, Inhalationen, Sekretlösern, Augensalben oder Vitaminen zur Unterstützung der Therapie notwendig.

Sehr wichtig für die erfolgreiche Behandlung ist eine gute, begleitende Pflege. Augen und Nase sollten mehrmals täglich mit physiologischer Kochsalzlösung gereinigt (Nasenspülung) und von Sekret befreit werden. Anschließend hilft das Auftragen einer nicht reizenden Salbe, die Entstehung von Wunden zu vermeiden (Hartmann, Hein 2002, Huebner 2008).
Es sollte aromatisches, geschmacksintensives Futter angeboten werden, das bei Schmerzen in der Maulhöhle unter Umständen angewärmt und püriert bzw. als Flüssignahrung angeboten werden muss (Hartmann, Hein 2002).

Bei akutem Katzenschnupfen ist mit intensiver Behandlung eine Heilung in den meisten Fällen möglich. Eine vollständige Erregerbeseitigung ist jedoch nicht immer möglich (Hartmann, Hein 2002). Rezidive können daher auftreten.

Katzenschnupfen - Allgemein

Die Therapie eines akuten Katzenschnupfens erfordert eine intensive Behandlung des Patienten sowie eine gründliche Hygiene. Es werden folgende Therapieempfehlungen in der Literatur ausgesprochen:

• Immer antibiotische Abdeckung auch bei primär nur viraler Ursache, zur Verhinderung von Sekundärinfektionen mit Breitbandantibiotikum (z.B. Amoxicillin mit Clavulansäure 25mg/kg KM alle 12 Stunden) (Hartmann, Hein 2002)
• Selten systemischer Einsatz von antiviralen Medikamenten - wegen mangelnder Präparate (außer Humanmedizin.) und häufig starker Nebenwirkungen (Huebner 2008)
• Immunmodulatoren / Paramunitätsinducer zur Unterstützung des Immunsystems - die Wirksamkeit wurde laut Hartmann und Hein (2002) bisher nicht durch Studien belegt.
• Spezifische Gamma-Globuline – die therapeutische Wirkung ist wahrscheinlich, bisher aber nicht eindeutig bewiesen. Neben der subcutanen, wird auch die lokale Anwendung (Auge, Nase) empfohlen (Hartmann, Hein 2002)
• Infusion bei Inappetenz und erhöhtem Speichelfluss (wenn möglich als Dauerinfusion), soweit vorhanden sollte dabei ein Kaliumdefizit oder eine Azidose ausgeglichen werden (Hartmann, Hein 2002).
• Vitamine zur Unterstützung der Heilung insbesondere bei Schleimhautulzera oder Nekrosen: Vit. A 400 IU/kg KM alle 24 Stunden p.o., Vit-B-Komplex und Vit C 80 mg/kg KM alle acht Stunden p.o. (Hartmann, Hein 2002).
• Augensalbe entsprechend dem auslösenden Erreger und den Veränderungen – regelmäßig in kurzen Abständen (z.B. alle 4 Stunden) (Hartmann, Hein 2002)
• Sekretlöser z.B. Bromhexin 0,5mg/kg KM p.o. alle 12 Stunden oder per inhalationem (Hartmann, Hein 2002)
• Phenylepinephrin – zur Entlastung der Atemwege (Huebner 2008)
• Inhalation mit Vernebelungsapparat ist besser als Nasentropfen, die die Nasenschleimhaut austrocknen (Hartmann, Hein 2002)
• Gute begleitende Pflege, Reinigung von Augen und Nase mehrmals täglich mit physiologischer Kochsalzlösung (Nasenspülung), Sekret entfernen, reizlose Salbe auftragen zur Vermeidung von Exkoriationen (Hartmann, Hein 2002, Huebner 2008)
• Es sollte aromatisches, geschmacksintensives Futter angeboten werden, bei Schmerzen in der Maulhöhle (Ulzera) kann dieses angewärmt und püriert bzw. als Flüssignahrung angeboten werden (Hartmann, Hein 2002)
• Zur Appetitanregung können Diazepam (0,1mg/kg KM einmalig i.v.) oder Cyproheptadin (0,5mg/kg KM alle 12 Stunden p.o.) verabreicht werden (Hartmann, Hein 2002)
• Wird länger als drei Tage kein Futter angenommen, ist eine Ernährung per Sonde zu empfehlen (Hartmann, Hein 2002)
• Wichtig sind gute hygienische Maßnahmen in großen Katzenhaltungen (Huebner 2008)

Chlamydophila felis - speziell

Für die lokale Behandlung werden Tetrazyklin-haltige Augensalben 3x täglich über 3 Wochen (1-2 Wochen länger als klinische Symptome) empfohlen (Eule 2008).

Sparkes et al. haben 1999 festgestellt, dass die kombinierte lokale (Fusidinsäure Augensalbe) und systemische (Doxycyclin 10mg/kg/d p.o.) Therapie von durch Chlamydien ausgelösten Konjunktivitiden erfolgreicher ist als die ausschließlich lokale Therapie (Chlortetracyclin Augensalbe). Die ausschließlich lokale Behandlung mit Fusidinsäure Augensalbe ist nicht zu empfehlen (entspricht Placebo) (Sparkes et al. 1999).

Systemisch sind gegen Chlamydien intrazellulär wirksame Antibiotika wirksam (Hartmann, Hein 2002), dazu gehören:

• Amoxicillin mit Clavulansäure 10 mg/kg KM alle 12 Stunden per oral über 4 Wochen (Eule 2008)
• Erythromyzin 10-20 mg/kg KM alle 12 Stunden s.c. oder 5-10 mg/kg KM viermal täglich per oral (Eule 2008)
• Doxyzyklin 5 mg/kg KM alle 12 Stunden p.o. über mindestens 3 Wochen – Doxyzyklin gilt laut Hartmann und Hein (2002) als Mittel der Wahl, da es die Zellmembran sehr gut penetriert, außerdem habe es unter den Tetrazyklinen die geringsten Nebenwirkungen. Bei trächtigen Katzen und Jungtieren, sei es jedoch wegen Knochenschäden und Zahnverfärbungen, kontraindiziert. Außerdem könne die orale Gabe vor allem bei anorektischen Katzen zu Magen-Darm-Reizungen führen.
• Enrofloxacin 5mg/kg einmal täglich p.o. oder s.c. - gilt ebenfalls als gut wirksam. Die bei jungen Hunden bekannte gelenkschädigende Wirkung, ist laut Hartmann und Hein (2002) bei Katzen nicht bekannt. Auch die gelegentlich beschriebene Retinadegeneration trete nur äußerst selten und wohl nur bei höherer Dosierung auf.
• Azithromyzin über 2 Wochen 7-10mg/kg KM einmal täglich per oral, dann eine Woche 5mg/kg KM einmal täglich per oral, dann 2 Wochen 5mg/kg KM einmal täglich jeden zweiten Tag per oral